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诃子提取物对3种致病菌的体外抑菌效果及其机制研究  PDF

  • 赵君微
  • 杨帅
  • 袁婧
  • 杨利国
华中农业大学动物科学技术学院,武汉 430070

中图分类号: S852.61

最近更新:2023-03-31

DOI:10.13300/j.cnki.hnlkxb.2023.02.008

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摘要

为探究诃子在畜禽疫病防控中的作用及应用潜力,以大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌3种常见致病菌为对象,对比诃子和其他11种中药提取物的抑菌圈直径和最小抑菌浓度(MIC),分析诃子培养上清液的总漏出率和电导率、蛋白浓度及诃子对细菌DNA和蛋白含量的影响。结果显示:诃子比其他11种中药的抑菌效果更强,表现为抑菌圈直径更大,MIC更低。培养上清液的电导率和漏出率增加,用2倍 MIC诃子药液处理8 h后,大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌上清液蛋白浓度显著增加(P<0.05)。诃子抑制大肠埃希菌蛋白合成,使分子质量约为80 ku的蛋白缺失;对肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌蛋白质合成影响不明显,对细菌DNA也没有明显的凝胶阻滞作用,但能降解DNA。以上结果表明:诃子具有较好的抑菌效果,其作用机制是通过破坏细菌细胞膜通透性,抑制细菌核酸和蛋白合成而发挥抑菌作用。

大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌是常见的革兰氏阴性

1。大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌感染可致奶牛乳房炎,对畜牧业造成直接危害;阴沟肠杆菌感染可引起牛腹泻、肺炎和死2。而抗菌药物的广泛使用已经引起较为严峻的细菌耐药问3-4。耐药菌主要通过产生破坏抗生素结构的5、改变抗生素作用的靶向位6、改变细菌细胞壁或细胞膜通透性、生成主动外排系7和遗传变异等获得耐药性。耐药菌获得耐药性方式的多样性和多重耐药8的特点,增加了动物疫病防治工作的难度,对环境和畜牧业也会造成一定程度的污染和危害。在畜禽养殖中,为了避免细菌产生耐药性,多数抗生素已被禁用;在乳用家畜中,用抗生素治疗后必须弃奶,造成巨大经济损失。因此,迫切需要找到可以替代或减少使用抗生素的新型药物。

中药在我国有悠久的历史,由于其易获得、残留少、不易产生耐药性的优点,成为治疗耐药菌感染的理想药

9。关于中药抑菌效果的报道很多,如含地锦草、石榴皮等的中药复方药效与阿莫西林相似,能降低大肠杆菌感染雏鸭造成的死亡10。黄芩、地榆能抑制致犊牛腹泻的大肠杆11,五倍子对奶牛乳房炎主要致病菌均有抑制作12。诃子(Terminalia chebula)是使君子科植物,分布于云南、广东、广西等地,其药用部位为成熟果实,药理作用主要是抗菌、抗氧化、促消化和保肝利胆13。诃子具有多种活性成分,如没食子酸甲酯、槲皮素等都具有一定的抑菌作14-15。近年来,已有研究报道了诃子提取物的有效活性成分及诃子对鲍曼不动杆菌和金黄色葡萄球菌的抑菌效16-17,但对大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的抑菌作用及与其他药物的比较研究很少。因此,本研究探讨诃子提取物对3种常见致病菌的抑菌效果和作用机制,旨在为我国畜禽传染病防控技术提供新思路。

1 材料与方法

1.1 药品与试剂

本试验采用的中药醇提取物(10∶1)为固体粉末,包括连翘、诃子、苦参、黄连、五味子、紫花地丁、金银花、苏木、乌梅、女贞子、蒲公英、黄芪共12种,均购自陕西文迪生物科技有限公司;MH肉汤、NA琼脂,购自青岛海博生物技术有限公司;Bradford法蛋白浓度检测试剂盒、空白药敏纸片,购自北京索莱宝科技有限公司;细菌总蛋白提取试剂盒,购自北京庄盟国际生物科技有限公司;细菌基因组DNA提取试剂盒,购自北京康为世纪生物科技有限公司;考马斯亮蓝染色液(G-250)和蛋白预制胶试剂盒,购自兰杰柯科技有限公司。

1.2 菌种

标准大肠埃希菌(FSCC149002)、肺炎克雷伯菌(FSCC167002)、阴沟肠杆菌(FSCC145003)由华中农业大学动物遗传育种教育部重点实验室保存。

1.3 中药提取物药液和菌液的制备

取本文“1.1”中12种中药提取物各4 g,分别溶于20 mL无菌水中制成0.2 g/mL的药液,水浴锅加热溶解后,置于121 ℃灭菌锅灭菌15 min,4 ℃保存,备用。

划线复苏冻存大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、阴沟肠杆菌菌株,分别挑取单菌落于MH肉汤培养基37 ℃、220 r/min培养16 h,调整各菌悬液浓度分别为1×108 和1×105 cfu/mL,4 ℃保存,备用。

1.4 药敏纸片制备

于96孔板加入药敏纸片,每孔分别加入制备好的12种中药提取物药液和 ddH2O(对照)100 µL,使药敏纸片充分吸收药液,而后将纸片取出,于60 ℃烘箱烘干备用。

1.5 抑菌效果检测

1) 抑菌圈。采用药敏纸片扩散

18,将制备好的3种菌液(终浓度为1×108 cfu/mL)100 µL用涂布棒分别均匀涂布于NA琼脂平板,在通风橱通风30 min使平板干燥,取同种中药提取物药液的3个药敏纸片呈正三角形分布贴于NA平板。药敏纸片直径6 mm,2个药敏纸片间距> 24 mm,药敏纸片距培养皿边缘> 15 mm。在37 ℃恒温培养箱培养16 h,采用游标卡尺测量抑菌圈直径,从不同方向测量,结果取平均值。

2) 最小抑菌浓度(MIC)。用二倍稀释

19,在96孔板各孔加入150 µL MH肉汤培养基,各排第1孔分别加入不同的中药提取物药液150 µL,横向2倍稀释到第10孔,在第1~11孔加入菌液(终浓度为1×105 cfu/mL),第11孔作阳性对照,第12孔不处理作阴性对照。每组3个重复,放入恒温培养箱培养24 h,观察每孔澄清程度,以每组澄清孔对应的最小浓度为最小抑菌浓度。

1.6 总漏出率和电导率的测定

依据比色法测定诃子培养上清液的总漏出率(OD600 nm)和培养液电导率(OD450 nm)相对

20。取3种菌液各500 μL(终浓度为1×108 cfu/mL)至1.5 mL离心管中,分别加入500 μL不同浓度的诃子提取物药液,使其终浓度分别为大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、阴沟肠杆菌的1倍、2倍和 4倍 MIC,以500 μL ddH2O作对照,37 ℃孵育,分别取培养0、2、4、6、8 h 的培养液5 000 r/min离心10 min,取上清液,用酶标仪在600 nm波长下测菌体培养液的总漏出率,在450 nm波长下测定菌体培养液的电导率。

1.7 胞外蛋白浓度测定

细菌培养液蛋白浓度用Bradford

21测定。取3种菌液各500 μL(终浓度为1×108 cfu/mL)至1.5 mL离心管中,分别加入500 μL不同浓度的诃子提取物药液,使其终浓度分别为该细菌的1倍和2倍 MIC,以500 μL ddH2O作对照,37 ℃孵育0、8 h,5 000 r/min离心10 min。取上清测定蛋白浓度,重复3次。数据取其平均值,以诃子浓度为横坐标,8 h后上清液中增加的蛋白浓度为纵坐标绘制柱状图。

1.8 DNA含量的凝胶电泳分析

取3种菌液各500 μL(终浓度为1×108 cfu/mL)至1.5 mL离心管中,分别加入500 μL不同浓度诃子提取物药液,使其终浓度分别为1倍、2倍和4倍MIC,以500 μL ddH2O作对照,37 ℃孵育0、2、4、6 h,提取细菌基因组DNA,用10 g/L琼脂糖凝胶电泳,并用凝胶成像仪显影。

1.9 胞内蛋白SDS-PAGE分析

分别加入诃子提取物药液至终浓度为1倍、2倍和4倍MIC 2 mL,ddH2O为阴性对照,菌液2 mL,37 ℃培养8 h,用细菌总蛋白提取试剂盒提取胞内蛋白,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析。每个样品取16 µL加入4 µL蛋白上样缓冲液,沸水浴5 min,冷却至室温,吸取15 µL上样,电压80 V,当样品到达分离胶边缘时加压至120 V,直至样品移动至距胶底端1 cm结束,取下胶板,染色,脱色完全后置于凝胶成像系统进行观察。

1.10 DNA迁移情况分析

用改良的凝胶阻滞方

22分析DNA迁移情况,即取细菌基因组DNA,构建基因组与诃子的作用体系。在微量离心管中分别加入5 μL 0.5、1、2和4倍MIC浓度诃子提取物药液和5 μL基因组DNA,加入超纯水使各体系补足至20 μL,混匀后置于37 ℃恒温培养箱孵育10 min,用10 g/L琼脂糖凝胶电泳,利用凝胶成像仪检测DNA的迁移情况。

1.11 数据处理

用Excel 2010软件对试验数据进行统计分析,数据均以“平均值±标准误”表示,用SPSS 24 统计软件对细菌蛋白浓度进行单因素ANOVA分析组间显著性,用GraphPad Prism 8软件进行绘图。

2 结果与分析

2.1 诃子的抑菌效果

比较12种中药提取物对大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的抑菌圈直径测量结果(表1)可见,诃子对3种致病菌的抑菌圈直径均高于其他中药提取物。除诃子外,乌梅也表现出一定的抑菌效果,但乌梅对肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的抑菌效果不及诃子,对大肠埃希菌未表现出抑菌作用。

表1  诃子等12种中药提取物对大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的抑菌圈直径
Table 1  Inhibitory circle diameter of 12 Chinese herbal extracts on Escherichia coliKlebsiella pneumoniae and Enterobacter cloacae ( mm )

中药提取物

Chinese herbal extract

大肠埃希菌

Escherichia coli

肺炎克雷伯菌

Klebsiella pneumoniae

阴沟肠杆菌

Enterobacter cloacae

诃子 Terminalia chebula 8.53±0.34 8.61±0.35 8.51±0.42
乌梅 Fructus mume - 8.10±0.65 7.95±0.89
黄连 Coptis chinensis - 7.30±0.29 -
五味子 Schisandra chinensis 7.13±0.24 7.30±0.43 8.70±0.37
蒲公英 Taraxacum mongolicum 7.19±0.36 7.27±0.24 6.73±0.33
女贞子 Fructus Ligustri 7.03±0.25 7.39±0.28 7.50±0.75
金银花 Lonicera japonica 6.20±0.16 6.87±0.09 6.40±0.16
苏木 Caesalpinia sappan - 7.83±0.24 6.37±0.29
连翘 Forsythia suspensa - 7.07±0.82 6.63±0.42
紫花地丁 Viola philippica - 7.50±0.45 -
苦参 Sophora flavescens - 7.60±0.08 -
黄芪 Astragalus memeranaceus - - 7.25±0.05

注:  -表示抑菌效果不明显。Note: - indicates that the antibacterial effect is not obvious.

比较12种中药提取物对大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的最小抑菌质量浓度(MIC)(表2),可见诃子的MIC最小,与抑菌圈试验结果基本一致。除诃子和乌梅外,其他中药对几种常见致病菌几乎没有抑菌效果。相较于乌梅,诃子对几种致病菌的MIC更低。

表2  诃子等12种中药提取物对大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌的最小抑菌浓度
Table 2  Minimal inhibitory concentration of 12 Chinese herbal extracts on Escherichia coliKlebsiella pneumoniae and Enterobacter cloacae ( mg/mL )

中药提取物

Chinese herbal extract

大肠埃希菌

Escherichia coli

肺炎克雷伯菌

Klebsiella pneumoniae

阴沟肠杆菌

Enterobacter cloacae

诃子 Terminalia chebula 6.25 12.50 6.25
乌梅 Fructus mume 50.00 50.00 50.00
黄连 Coptis chinensis - 25.00 -
五味子 Schisandra chinensis - - -
蒲公英 Taraxacum mongolicum - - -
女贞子 Fructus Ligustri - - -
金银花 Lonicera japonica - - -
苏木 Caesalpinia sappan - - -
连翘 Forsythia suspensa - - -
紫花地丁 Viola philippica - - -
苦参 Sophora flavescens - - -
黄芪 Astragalus memeranaceus - - -

注:  -表示质量浓度为100 mg/mL时,无抑菌效果。Note:- means that no antibacterial effect is observed when the concentration is 100 mg/mL.

2.2 诃子对致病菌总漏出率、电导率和蛋白增量的影响

大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌3种致病菌用0、1、2和4倍MIC浓度诃子药液处理后,培养液总漏出率、电导率和蛋白增量结果见图1。各致病菌对诃子药液均敏感,随着培养时间延长,细胞膜通透性增加,造成大量物质外泄,表现为光密度值升高(图1 A、B和C),而对照组的光密度值相对平稳;高浓度的诃子药液(质量浓度为4倍MIC和2倍MIC)2 h便可发挥抑菌效果,漏出率迅速升高,而低浓度的诃子溶液则在作用后期才发挥抑菌优势。

图1  大肠埃希菌(A、D、G)、肺炎克雷伯菌(B、E、H)和阴沟肠杆菌(C、F、I)经诃子药液处理后,培养液的总漏出率(A、B、C)、电导率(D、E、F)和蛋白增量(G、H、I)

Fig.1  The total leakage rate (A,B,C), conductivity (D,E,F) and protein increment (G,H,I) of Escherichia coli(A,D,G), Klebsiella pneumoniae(B,E,H) and Enterobacter cloacae(C,F,I) treated with Terminalia chebula

用不同质量浓度诃子药液处理后,3种致病菌大量离子外流,使得胞外离子浓度增大,光密度增加(图1 D、E和F)。诃子处理致病菌后,细菌中大分子蛋白外流,加速菌体死亡;诃子作用8 h,各致病菌胞外蛋白含量均高于对照组,其中大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌在2倍 MIC诃子浓度下培养液中蛋白含量显著高于对照组(P<0.05)(图1 G和H),但阴沟肠杆菌在1倍和2倍 MIC诃子浓度下培养液中蛋白含量均无显著变化(图1 I)。

2.3 致病菌用诃子处理后的DNA含量

大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌分别用0、1、2和4倍MIC浓度诃子药液处理后,致病菌DNA的含量变化如图2所示。对照组中3种致病菌的DNA条带随时间延长变亮,表明细菌数在增加。诃子提取物药液处理组的DNA条带随时间延长变暗,说明诃子能抑制细菌的增殖,其抑菌强度与剂量及作用时期呈正相关关系。

图2  大肠埃希菌(A)、肺炎克雷伯菌(B)和阴沟肠杆菌(C)用诃子药液处理0、2、4和6 h的DNA凝胶电泳图

Fig.2  DNA gel electrophoresis results of Escherichia coli(A), Klebsiella pneumoniae(B) and Enterobacter cloacae(C) treated with Terminalia chebula for 0, 2, 4 and 6 h

2.4 诃子处理后的致病菌蛋白含量

用1倍MIC浓度诃子药液处理3种致病菌0、4和8 h的菌体蛋白含量变化如图3所示。大肠埃希菌用诃子提取物药液处理后4、8 h,SDS-PAGE图谱中缺少1个约为80 ku 的条带,而对照组存在该条带(图3A),说明诃子抑制大肠埃希菌蛋白合成,从而表现出缺失。肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌用诃子提取物药液处理后,菌体蛋白电泳图谱未出现蛋白缺失现象(图3B和C)。

图3  大肠埃希菌(A)、肺炎克雷伯菌(B)和阴沟肠杆菌(C)用0和1倍MIC浓度诃子药液处理0、4和8 h的蛋白SDS-PAGE图

Fig.3  SDS-PAGE of proteins of Escherichia coli(A), Klebsiella pneumoniae(B) and Enterobacter cloacae(C) treated with Terminalia chebula in concentration of 0 and 1 MIC for 0, 4 and 8 h

M:Marker.

2.5 诃子对致病菌DNA的凝胶阻滞作用

取3种致病菌DNA,分别用0、0.5、1、2和4倍MIC浓度诃子药液处理10 min后,DNA的凝胶阻滞结果见图4。发现DNA条带未出现拖尾现象,说明没有明显的阻滞作用。随着诃子药液浓度的增加,3种致病菌的DNA条带明显变暗,而对照组的DNA条带清晰可见,表明诃子虽不能直接与细菌DNA相互作用,但诃子对DNA有明显的降解作用。

图4  大肠埃希菌(A)、肺炎克雷伯菌(B)和阴沟肠杆菌(C)的DNA用0、0.5、1、2和4倍MIC浓度诃子药液处理10 min的DNA凝胶电泳图

Fig.4  DNA gel electrophorograms of Escherichia coli(A), Klebsiella pneumoniae(B) and Enterobacter cloacae(C) treated with Terminalia chebula in concentration of 0, 0.5, 1, 2 and 4 MIC for 10 min

3 讨论

通常,某种中草药只对1种或少数几种致病菌有抑菌作用,如艾叶、黄芩对大肠埃希菌有抑菌效

23,黄连、连翘对肺炎克雷伯菌有抑菌效24,番石榴叶对阴沟肠杆菌有抑菌效25。本研究比较诃子与11种中草药的抑菌效果,发现诃子对3种致病菌均表现出较好的抑菌效果,而其他中药只对特定致病菌表现出抑菌效果且效果较差。因此,相比于其他中药,诃子提取物的抑菌效果更强。本研究中除诃子外的11种中药,其抑菌效果与其他文献报道有一定差2426,可能与本试验所采用的中药提取方法或所用致病菌的耐药性有关。

细胞膜是细菌天然保护屏障,在维持细胞内环境稳定代谢和调节选择物质交换方面有重要作

27。细菌细胞内含有大量的水、离子、大分子蛋白和细胞器。当细菌受到抑菌剂或杀菌剂作用时,膜被破坏,其通透性和流动性增加,导致大量电解质流向胞28。郭娟22通过分析大分子释放量和电导率,发现抗菌肽P-1破坏粉红单端孢,使胞内电解质和大分子释放达到抑菌效果,这和本研究中诃子药液处理后细菌上清液电导率、漏出率和蛋白浓度增加结果一致,表明诃子抑菌的作用机制之一,是破坏细菌细胞膜的结构,改变膜通透性,使其电解质及大分子流出,导致细菌死亡。

DNA和蛋白在细菌增殖中保持相对稳定,而抑菌剂可以影响细菌DNA的合成、蛋白表达,或直接作用于DNA。本试验中用诃子处理后的3种致病菌,DNA浓度降低,细菌数量减少,表明诃子能抑制细菌的增殖,并具有杀菌效果。研究丁香酚和异丁香酚的抑菌机制时,发现丁香酚能破坏细胞壁、膜,细胞膜通透性改变,使其失去生命力,并且抑制部分蛋白合

29,可合理解释本试验关于诃子处理大肠埃希菌后细菌总蛋白缺失80 ku条带的结果,表明诃子的抑菌机制之二,可能是抑制蛋白质的合成导致细菌死亡。

凝胶阻滞作用可以反映药物是否与DNA直接作用,是探究药物作用机制的重要手段。本研究用诃子处理细菌DNA后,虽没有发现明显的阻滞作用,但DNA条带明显变暗,表明诃子能降解DNA,即诃子的抑菌机制之三,是通过抑制DNA合成和降解部分DNA发挥抑菌作用。

总之,诃子在体外可以通过多种机制抑菌,如破坏细菌细胞膜、改变核酸和蛋白的合成,具有良好体外抑菌效果,在畜禽呼吸系统和消化系统病原体疾病的防控中具有应用潜力,值得进行临床应用研究。

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